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最新临床数据:30名脱发患者在干细胞治疗后,发量显著增多

来源:博雅

日期: 2021.11.11

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中国健康促进与教育协会发布的一份《中国脱发人群调查》显示,中国脱发人群约为3亿,平均5个人中就有一位出现脱发的情况。且脱发逐渐年轻化,阿里健康发布的《拯救脱发趣味白皮书》数据显示:“90后”正以36.1%的占比,几乎逼平占比38.5%的“80后”。

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脂溢性脱发是目前最为常见的脱发,主要因为人体雄性激素分泌过剩,又被称为雄性激素性脱发(AGA)。目前,FDA批准用于雄性激素性脱发的药物仅限于口服非那雄胺和外用米诺地尔。非那雄胺通过抑制雄性激素分泌来产生效用,不过也有报道少量男性在用药期间可能出现暂时的性功能障碍或者性欲减退。近年来,再生医学和毛发组织工程领域的显著进展为引入新的基于细胞的方法来治疗脱发带来了新的希望。


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最近发表于《Dermatologic Surgery》的一篇文章研究了脂肪来源间充质干细胞条件培养液(ADSC-CM)对雄激素性脱发的影响[1]。研究纳入了30名接受非剥脱性点阵激光治疗的脱发患者,通过局部施用ADSC-CM,结果证明:ADSC-CM的应用加速了雄性激素性脱发患者头发密度和体积的增加。



雄性激素性脱发与干细胞治疗


雄性激素性脱发(AGA)根本原因被认为是头顶上的毛囊存在结构上的先天缺陷,毛囊的退化和萎缩,引起头发变稀变细变软。临床上AGA的特点是终端毛发逐渐转变为绒毛,导致弥漫性头发稀疏和发际线倒退。

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图片来自于文献4


干细胞是未成熟的前体细胞,具有自我更新和多系分化的能力。间充质干细胞是干细胞的一种类型,首先在骨髓中被发现,结缔组织中也有存在。脂肪组织中的间充质干细胞的产量大约是骨髓的40倍[2]。这样的特点使研究和使用间充质干细胞在临床领域变得容易。


最近,新的脱发疗法已经扩展到包括头发组织工程和干细胞治疗。在脱发治疗研究领域,脂肪组织是一个特别有吸引力的间质干细胞(MSCs)来源,它具有多项分化潜力[3]脂肪衍生的间质干细胞通过调节毛囊细胞和头发周期,在体外和体内促进头发生长[4]

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图片来自于文献4


脂肪源性干细胞条件培养液(ADSC-CM)含有VEGF、HGF、PDGF和IGF等分泌因子[5]这些生长因子都有助于毛囊的激活和随后头发密度的增加。


已有研究表明,血管内皮生长因子(VEGF)通过促进血管生成来控制毛囊的生长和大小,而肝细胞生长因子(HGF)在毛囊的周期性生长中起着重要的作用[6]。此外,血小板衍生生长因子(PDGF)诱导并维持了毛囊的前胶原期,胰岛素样生长因子(IGF)控制着头发的生长周期,促进了毛发轴的分化[7]

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图片来自文献6

30名脱发患者接受干细胞治疗


体外研究表明,脂肪源性干细胞条件培养液(ADSC-CM)通过促进人真皮乳头细胞(DPC)增殖,激活ERK和AKT信号通路而影响人真皮乳头细胞。由于ERK和AKT信号通路控制细胞增殖,毛发再生可能是由于DPC的存活和增殖所致。脂肪源性干细胞条件培养液可能通过调节细胞周期来促进头发的生长,从而促进DPC的增殖。


在新发表的这篇研究中,30名接受非剥脱性点阵激光治疗的脱发患者被局部施用ADSC-CM或安慰剂溶液。


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脂肪间充质干细胞条件培养液治疗第12周后,患者头发的密度和体积与使用安慰剂治疗显著增多,且干细胞治疗组的整体恢复评分高于安慰剂组。该结果与此前发表于《 international Journal of Dermatolog》上一篇的ADSC-CM在女性型脱发中的临床回顾性病例系列研究中的结果一致。


在为期12周的研究期间,两组患者均未发现不良事件或因显著副作用而退出研究的现象。

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图片来自文献2


展望


这项研究证实非剥脱性点阵激光治疗后脱发患者使用ADSC-CM,可以加速AGA患者头发密度和体积的增加。不过最近的研究表明,脱发不仅涉及到人真皮乳头细胞的改变,而且还涉及人类毛囊干细胞的改变。间充质干细胞的旁分泌活性非常复杂,未来有必要进行进一步的研究,以确定治疗脱发的新靶点。


再生医学与人类毛发生物学的最新进展极大地提高了我们对毛发再生新生机制的理解。基于间充质干细胞治疗脱发给我们带来了新的希望,并为在常规治疗无效时开发再生脱发疗法铺平了道路。



参考文献:

[1] The Effect of Conditioned Media From Human Adipocyte-Derived Mesenchymal Stem Cells on Androgenetic Alopecia After Nonablative Fractional Laser Treatment

https://journals.lww.com/dermatologicsurgery/Abstract/2020/12000/The_Effect_of_Conditioned_Media_From_Human.47.aspx

[2]Shin H, Ryu HH, Kwon O, Park BS, et al. Clinical use of conditioned media of adipose tissue-derived stem cells in female pattern hair loss: a retrospective case series study. Int J Dermatol 2015;54:730–5. https://onlinelibrary.wiley.com/doi/full/10.1111/ijd.12650

[3]Bajek A, Gurtowska N, Olkowska J, Kazmierski L, et al. Adipose-derived stem cells as a tool in cell-based therapies. Arch Immunol Ther Exp (Warsz) 2016;64:443–54. https://link.springer.com/article/10.1007%2Fs00005-016-0394-x

[4]Owczarczyk-Saczonek A, Krajewska-Wlodarczyk M, Kruszewska A, Banasiak Ł, et al. Therapeutic potential of stem cells in follicle regeneration. Stem Cells Int 2018;2018:1049641. http://doi.org/10.1155/2018/1049641

[5]Won CH, Yoo HG, Kwon OS, Sung MY, et al. Hair growth promoting effects of adipose tissue-derived stem cells. J Dermatol Sci 2010;57:134–7.

[6]Jindo T, Tsuboi R, Takamori K, Ogawa H. Local injection of hepatocyte growth factor/scatter factor (HGF/SF) alters cyclic growth of murine hair follicles. J Invest Dermatol 1998;110:338–42. https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S0022202X15400430

[7]Rezza A, Sennett R, Tanguy M, Clavel C, et al. PDGF signalling in the dermis and in dermal condensates is dispensable for hair follicle induction and formation. Exp Dermatol 2015;24:468–70. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25708924/

[8]Shin H, Won CH, Chung WK, Park BS. Up-to-date clinical trials of hair regeneration using conditioned media of adipose-derived stem cells in male and female pattern hair loss. Curr Stem Cell Res Ther 2017;12:524–30. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28474542/

[9]Du Z, Tong X, Ye X. Cyclin D1 promotes cell cycle progression through enhancing NDR1/2 kinase activity independent of cyclin-dependent kinase 4. J Biol Chem 2013;288:26678–87. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23897809/


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